操作步驟：（實驗前請先閱讀注意事項）
提示：使用前請先在漂洗液RW瓶和70%乙醇瓶中加入只定量無水乙醇!
操作前在裂解液RLT中加入β-巰基乙醇至終濃度1%，如1mlRLT中加入10μlβ-巰基乙醇。此裂解液現用現配。配好的RLT4℃可放置一個月。
1.組織培養細胞
a.收集<107懸浮細胞到一個1.5ml離心管，對于貼壁細胞，孔板培養可以直接裂解，細胞瓶培養應該先用胰蛋白酶消化后吹打下來收集。
b.13，000rpm離心10秒（或者300g離心5分鐘），使細胞沉淀下來。*吸棄上清，留下細胞團，注意不*棄上清會稀釋裂解液導致產量純度降低。
c.輕彈管壁將細胞沉淀*松散重懸，加入350μl（<5x106細胞）或者600μl（5x106-1x107細胞）裂解液RLT，吹打混勻后用手劇烈振蕩20秒，充分裂解。
d.用帶鈍針頭的一次性1ml（配0.9mm針頭）注射器抽打裂解物5-10次或直到得到滿意勻漿結果（或者電動勻漿30秒）,可以剪切DNA,降低粘稠度和提高產量。
e.接操作步驟項下3。
2.動物組織（例如鼠肝腦）
a.電動勻漿：新鮮組織用解剖刀迅速切成小碎塊,加入350μl（<20mg組織）或者600μl（20-30mg組織）的裂解液RLT后電動*勻漿20-40秒。
b.液氮研磨+勻漿：在液氮中研磨組織成細粉后，取適量組織細粉（20mg/30mg）轉入裝有350μl/600μl組織裂解液RLT的1.5ml離心管中,用手劇烈振蕩20秒，充分裂解。用帶鈍針頭的一次性1ml（配0.9mm針頭）注射器抽打裂解物10次或直到得到滿意勻漿結果（或者電動勻漿30秒）,可以剪切DNA,降低粘稠度和提高產量。
c.將勻漿后裂解物13，000rpm離心3分鐘,沉淀可能存在的裂解困難的碎片或者不溶物,將裂解物上清小心轉到一個新離心管。
d.接操作步驟項下3。
3.較準確估計裂解物（上清）體積,加入等體積的70%乙醇（請先檢查是否已加入無水乙醇!）,此時可能出現沉淀,但是不影響提取過程,立即吹打混勻,不要離心。
4.立刻將混合物（每次小于700μl,多可以分兩次加入）加入一個吸附柱RA中，（吸附柱放入收集管中）13,000rpm離心60秒，棄掉廢液。
5.加700μl去蛋白液RW1，室溫放置30秒，12，000rpm離心30秒，棄掉廢液。
如果DNA殘留明顯,可在加入RW1后室溫放置5分鐘再離心。
6.加入500μl漂洗液RW（請先檢查是否已加入無水乙醇!），12,000rpm離心30秒，棄掉廢液。加入500μl漂洗液RW,重復一遍。
7.將吸附柱RA放回空收集管中，13,000rpm離心2分鐘，盡量除去漂洗液,以免漂洗液中殘留乙醇抑制下游反應。
8.取出吸附柱RA，放入一個RNasefree離心管中，根據預期RNA產量在吸附膜的中間部位加30-50μlRNasefreewater（事先在70-90℃水浴中加熱可提高產量），室溫放置1分鐘，12,000rpm離心1分鐘。
9.如果預期RNA產量>30μg,加30-50μlRNasefreewater重復步驟8,合并兩次洗脫液,或者使用次的洗脫液加回到吸附柱重復步驟一遍（如果需要RNA濃度高）。
洗脫兩遍的RNA洗脫液濃度高,分兩次洗脫合并洗脫液的RNA產量比前者高15–30%,但是濃度要低,用戶根據需要選擇。
